外周血核型分析是通過分析外周血中白細胞的染色體核型來診斷各種遺傳疾病或染色體異常。為了進行外周血核型分析，需要從外周血樣本中分離出白細胞并培養，以促進白細胞分裂，最終進行染色體的觀察和分析。培養基的選擇和培養方法直接影響到培養效果和核型分析的結果。
外周血核型分析培養基的培養方法
1.樣本采集
外周血樣本通常通過靜脈采血獲取。采血后需要盡快將樣本送至實驗室，并注意避免血液凝固。
在樣本中加入抗凝劑（如EDTA或肝素），防止血液凝固。
2.培養基選擇
外周血細胞的培養需要使用特定的培養基，這些培養基可以為白細胞提供必要的營養成分，促進其分裂和增殖。常用的培養基包括：
RPMI-1640培養基：常用的基礎培養基，富含氨基酸、維生素和無機鹽。可以添加一定濃度的血清（如胎牛血清）來支持細胞的生長。
McCoy’s5A培養基：也可用于外周血培養，特別適合部分細胞類型的增殖。
F-10或MEM培養基：這些也是常見的細胞培養基，可根據需要加入適量的胎牛血清。
3.培養條件
細胞密度：一般來說，外周血樣本中的細胞密度不需要太高，一般的培養容器（如培養瓶或培養皿）中每毫升培養基加入1-2毫升的血液樣本。
培養溫度：大多數白細胞的培養在37°C的恒溫條件下進行，模擬人體的生理溫度。
CO?濃度：通常培養環境需要保持5%CO?，以維持培養基的pH值穩定。
濕度：為保證細胞的正常生長，培養箱內的濕度需要保持在80%到90%之間。
4.促進細胞分裂（加速白細胞增殖）
為了促進白細胞的分裂和增殖，常常添加以下物質：
植物血凝素（PHA）：PHA是一種常用的刺激劑，用來誘導T淋巴細胞分裂。它能夠刺激T細胞進入細胞周期并進行分裂，是進行核型分析的常用刺激物。
科茨血凝素（ConA）：也是一種常見的T細胞刺激物，可作為PHA的替代物。
5.培養時間
外周血樣本在培養基中一般培養48到72小時，這個時間段可以促進白細胞分裂。過長或過短的培養時間都可能影響結果的準確性，尤其是細胞的分裂階段，最佳的染色體分析通常在細胞分裂的中期（中期）階段。
6.染色體停滯劑
為了獲得適合染色體觀察的細胞分裂階段，通常在培養的最后12-24小時，加入秋水仙素（colchicine）或氯化秋水仙素，這類藥物會抑制有絲分裂的進行，使得細胞停留在中期階段，便于染色體的清晰觀察。
7.分離白細胞
在培養完成后，需要通過離心方法分離白細胞。常用的離心速度為1000-1500rpm，離心5-10分鐘，分離出細胞沉淀。
通過紅細胞裂解液（如NH4Cl緩沖液）去除血紅細胞，保留白細胞。處理后的細胞可以進行染色體涂片制備。
8.染色體準備與分析
細胞經過染色體染色（通常使用吉姆薩染色或Giemsa染色法），然后觀察染色體的形態和數目，進行核型分析。
總結
外周血核型分析的培養方法關鍵在于培養條件的控制、刺激物的添加以及細胞分裂的停滯劑使用。通過合適的培養基和培養環境，能夠有效促進白細胞分裂，獲取適合染色體分析的細胞。
